tecniche di laboratorio biomedico (abilitante alla professione sanitaria di tecnico di laboratorio biomedico)

OBIETTIVI FORMATIVI RAGGIUNTI - MICROBIOLOGIA E VIROLOGIA
Fase Pre-analitica - FONDAMENTALE
Accettazione campioni: urine, emocolture, feci, espettorato, tamponi, liquor, materiali genitali
Valutazione idoneità campione, criteri di scarto, tracciabilità
Semina in cappa classe II, sicurezza biologica BSL2/BSL3, DPI, smaltimento
Batteriologia - CORE
Allestimento terreni: sangue, cioccolato, MacConkey, Chapman, Sabouraud, Mueller-Hinton
Tecniche di semina: per striscio, 4 quadranti, quantitative urine
Lettura piastre, riconoscimento colonie, conta batterica UFC/ml
Colorazione di Gram in autonomia, Ziehl-Neelsen, blu di metilene
Identificazione: test biochimici rapidi (catalasi, coagulasi, ossidasi) e sistemi automatici VITEK / MALDI-TOF
Antibiogramma: Kirby-Bauer diffusione, MIC, E-test, interpretazione EUCAST
Virologia
Prelievo e conservazione tamponi respiratori, sangue per sierologia
Estrazione acidi nucleici RNA/DNA
PCR Real-Time per SARS-CoV-2, Influenza, RSV, CMV, EBV, HBV, HCV, HIV
Sierologia: chemiluminescenza, ELISA per IgM/IgG, avidità
Test rapidi antigenici e gestione refertazione
Micologia e Parassitologia
Esame colturale funghi, esame microscopico a fresco, scotch test
Ricerca parassiti fecali: esame macroscopico, microscopico, test immunocromatografici
Emocolture e campioni critici
Gestione sistema automatico BACTEC / BacT/ALERT
Subcoltura da flacone positivo, Gram da emocoltura, comunicazione urgenza
Qualità e Sicurezza
Controllo qualità terreni, ceppi ATCC
Gestione catena del freddo per PCR
ISO 15189, tracciabilità, gestione referto critico
Sanificazione, autoclave, validazione ciclo

SETTORI TIROCINIO MICROBIOLOGIA E VIROLOGIA
ACCETTAZIONE E PRE-ANALITICA
smistamento campioni, controllo idoneità, inserimento LIS
gestione urgenze / campioni critici (liquor, emocolture)
BATTERIOLOGIA
Semina: urine, feci, tampone faringeo/nasale, espettorato, pus, materiali genitali
Terreni: sangue, cioccolato, MacConkey, mannitol salt agar, Sabouraud
Lettura piastre, isolamento colonie pure
IDENTIFICAZIONE BATTERICA
Colorazione di Gram, test rapidi: catalasi, coagulasi, ossidasi, indolo
Strumentazione: VITEK 2, MALDI-TOF, API
ANTIBIOGRAMMA
Kirby-Bauer, MIC, E-test
Lettura EUCAST, fenotipi resistenza: MRSA, VRE, ESBL, CRE, KPC
EMOCOLTURE E LIQUIDI BIOLOGICI
BACTEC / BacT/ALERT
Liquor, liquidi pleurici, articolari: esame microscopico e colturale
MICOLOGIA
Colture funghi, esame a fresco KOH, identificazione lieviti/muffe
PARASSITOLOGIA
Esame feci: a fresco, dopo concentrazione, scotch test per ossiuri
Antigeni rapidi: Giardia, Cryptosporidium, Entamoeba
Malaria: goccia spessa e striscio sottile
MICOBATTERIOLOGIA (BSL3)
Ziehl-Neelsen, semina Lowenstein-Jensen, sistema MGIT
GeneXpert MTB/RIF
VIROLOGIA MOLECOLARE
Estrazione RNA/DNA, PCR Real-Time
Pannello respiratorio: SARS-CoV-2, Influenza A/B, RSV
Quantificazione viremie: CMV, EBV, HBV, HCV, HIV
SIEROLOGIA VIROLOGICA
Chemiluminescenza CLIA, ELISA: HIV combo, HCV, HBsAg, Toxoplasma, CMV, EBV, Rosolia
Test rapidi, avidità IgG
STERILIZZAZIONE E QUALITÀ
Preparazione terreni, controllo qualità con ceppi ATCC
Autoclave, validazione, gestione rifiuti infetti

nessuno

TIROCINIO PRATICO

ESAME ORALE

Tirocinio pratico

OBIETTIVI FORMATIVI RAGGIUNTI - MICROBIOLOGIA E VIROLOGIA
Fase Pre-analitica - FONDAMENTALE
Accettazione campioni: urine, emocolture, feci, espettorato, tamponi, liquor, materiali genitali
Valutazione idoneità campione, criteri di scarto, tracciabilità
Semina in cappa classe II, sicurezza biologica BSL2/BSL3, DPI, smaltimento
Batteriologia - CORE
Allestimento terreni: sangue, cioccolato, MacConkey, Chapman, Sabouraud, Mueller-Hinton
Tecniche di semina: per striscio, 4 quadranti, quantitative urine
Lettura piastre, riconoscimento colonie, conta batterica UFC/ml
Colorazione di Gram in autonomia, Ziehl-Neelsen, blu di metilene
Identificazione: test biochimici rapidi (catalasi, coagulasi, ossidasi) e sistemi automatici VITEK / MALDI-TOF
Antibiogramma: Kirby-Bauer diffusione, MIC, E-test, interpretazione EUCAST
Virologia
Prelievo e conservazione tamponi respiratori, sangue per sierologia
Estrazione acidi nucleici RNA/DNA
PCR Real-Time per SARS-CoV-2, Influenza, RSV, CMV, EBV, HBV, HCV, HIV
Sierologia: chemiluminescenza, ELISA per IgM/IgG, avidità
Test rapidi antigenici e gestione refertazione
Micologia e Parassitologia
Esame colturale funghi, esame microscopico a fresco, scotch test
Ricerca parassiti fecali: esame macroscopico, microscopico, test immunocromatografici
Emocolture e campioni critici
Gestione sistema automatico BACTEC / BacT/ALERT
Subcoltura da flacone positivo, Gram da emocoltura, comunicazione urgenza
Qualità e Sicurezza
Controllo qualità terreni, ceppi ATCC
Gestione catena del freddo per PCR
ISO 15189, tracciabilità, gestione referto critico
Sanificazione, autoclave, validazione ciclo

SETTORI MICROBIOLOGIA E VIROLOGIA
ACCETTAZIONE E PRE-ANALITICA
smistamento campioni, controllo idoneità, inserimento LIS
gestione urgenze / campioni critici (liquor, emocolture)
BATTERIOLOGIA
Semina: urine, feci, tampone faringeo/nasale, espettorato, pus, materiali genitali
Terreni: sangue, cioccolato, MacConkey, mannitol salt agar, Sabouraud
Lettura piastre, isolamento colonie pure
IDENTIFICAZIONE BATTERICA
Colorazione di Gram, test rapidi: catalasi, coagulasi, ossidasi, indolo
Strumentazione: VITEK 2, MALDI-TOF, API
ANTIBIOGRAMMA
Kirby-Bauer, MIC, E-test
Lettura EUCAST, fenotipi resistenza: MRSA, VRE, ESBL, CRE, KPC
EMOCOLTURE E LIQUIDI BIOLOGICI
BACTEC / BacT/ALERT
Liquor, liquidi pleurici, articolari: esame microscopico e colturale
MICOLOGIA
Colture funghi, esame a fresco KOH, identificazione lieviti/muffe
PARASSITOLOGIA
Esame feci: a fresco, dopo concentrazione, scotch test per ossiuri
Antigeni rapidi: Giardia, Cryptosporidium, Entamoeba
Malaria: goccia spessa e striscio sottile
MICOBATTERIOLOGIA (BSL3)
Ziehl-Neelsen, semina Lowenstein-Jensen, sistema MGIT
GeneXpert MTB/RIF
VIROLOGIA MOLECOLARE
Estrazione RNA/DNA, PCR Real-Time
Pannello respiratorio: SARS-CoV-2, Influenza A/B, RSV
Quantificazione viremie: CMV, EBV, HBV, HCV, HIV
SIEROLOGIA VIROLOGICA
Chemiluminescenza CLIA, ELISA: HIV combo, HCV, HBsAg, Toxoplasma, CMV, EBV, Rosolia
Test rapidi, avidità IgG
STERILIZZAZIONE E QUALITÀ
Preparazione terreni, controllo qualità con ceppi ATCC
Autoclave, validazione, gestione rifiuti infetti

NESSUNO

tirocinio pratico

Idoneità

TIROCINIO PRATICO

Il Corso si propone di fornire agli Studenti le conoscenze di base sulla chimica, biochimica delle biomolecole e sulla struttura e organizzazione cellulare, propedeutiche allo studio delle altre discipline previste dal curriculum accademico. Al termine del corso, lo Studente saprà conoscere in maniera approfondita le caratteristiche dei legami chimici, il concetto di solubilità e soluzioni, le principali classi di composti organici, le principali classi di macromolecole biologiche (carboidrati, lipidi, proteine e acidi nucleici), la funzione degli enzimi, le principali vie metaboliche, le differenze tra cellula procariotica ed eucariotica, la struttura e la funzione degli organelli cellulari e del citoscheletro, i meccanismi molecolari del flusso dell'informazione genica dal DNA alle proteine.
Lo Studente avrà inoltre appreso i meccanismi del ciclo cellulare, della duplicazione del DNA, della mitosi, della meiosi e del processo apoptotico. Conoscerà le basi dei processi di gametogenesi e fecondazione ed avrà familiarità con i principi base della genetica mendeliana, i meccanismi di trasmissione dei caratteri nella specie umana, i tipi, le origini e le conseguenze delle mutazioni

Il Corso Integrato in Biologia e Biochimica si pone l'obiettivo di fornire agli studenti una visione sui concetti fondamentali, della chimica, della biologia e della biochimica. Queste tre discipline risultano infatti essere alla base dello sviluppo di ogni forma vivente, oltre che fondamentali per fornire il giusto approccio all'interno di un laboratorio di tipo biomedico.
Ogni singolo insegnamento avrà dei contenuti specifici che potranno essere consultati nel syllabus di riferimento

Lo Studente deve essere in possesso di conoscenze di base di fisica, chimica e biologia generale acquisite durante la scuola superiore

Il corso viene svolto mediante lezioni frontali ed esercitazioni in laboratorio durante le quali lo studente può intervenire con proposte e domande. Le lezioni sono supportate da presentazioni in powerpoint e filmati

La valutazione dell’apprendimento da parte dello studente viene effettuata con metodi diversi decisi dai singoli docenti di ogni modulo.
Il voto finale del corso integrato sarà dato dalla media ponderata delle valutazioni riportate nei singoli moduli.

Per i testi consigliati si raccomanda di controllare il syllabus dei singoli corsi

Conoscere le metodologie biochimiche e di biologia molecolare.
Conoscere i principali parametri biochimici nell’ambito della fisiopatologia.
Il Corso ha l'obiettivo di fornire allo studente le conoscenze sulle principali tecniche analitiche utilizzate in Medicina di Laboratorio, oltre alla conoscenza degli strumenti utilizzati oggi in Laboratorio

Il corso è diviso in due moduli: BIOCHIMICA CLINICA E BIOLOGIA MOLECOLARE CLINICA (modulo 1) e TECNICHE DI MEDICINA E DI LABORATORIO (modulo 2).

Conoscenze di biochimica di base, chimica generale e organica

Lezioni con slides e discussione attiva in aula con coinvolgimento degli studenti al ragionamento diagnostico.
Laboratorio

La valutazione finale del corso integrato deriverà dalla media ponderata (calcolata sulla base dei crediti di ciascun modulo) dei voti dei singoli moduli.

Wilson & Walker – Biochimica e Biologia Molecolare
M.Ciaccio e G. Lippi – Biochimica clinica e Medicina di laboratorio
L. Spandrio, Biochimica Clinica
Metodologie biochimiche e biomolecolari, Maccarone
Biochimica Clinica Essenziale, Albi
Fondamenti di Biochimica umana, Maccarone
Materiale fornito dal docente.

ANATOMIA UMANA:
Identificare le principali regioni del corpo. Conoscere l'organizzazione dei vari
apparati. Descrivere la morfologia, posizione, rapporti degli organi che li
compongono, nonché le loro principali caratteristiche strutturali correlandole con la
funzione.
FISIOLOGIA:
Il principale obiettivo del corso è quello di fornire una conoscenza di base della Fisiologia Umana e delle principali funzioni dell’organismo.
ISTOLOGIA:
Il corso si prefigge di fornire agli studenti una conoscenza generale, commisurata ai crediti formativi offerti, di come le cellule del nostro organismo si specializzano e si associano a formare tessuti in grado di svolgere le moltissime funzioni che mantengono il nostro organismo in vita ed in salute. Scopo cruciale dell’insegnamento è di introdurre il concetto di relazione struttura/funzione, pilastro portante dell’istologia, e illustrare come la morfologia (la “forma”) dei tessuti e delle cellule contribuisce in maniera fondamentale alla funzione da essi svolta. La frequenza delle lezioni in presenza non è obbligatoria ma fortemente consigliata e l’interazione degli studenti con il docente a lezione è gradita e ben accetta e considerata parte integrante e importante della formazione dello studente. Al termine del corso lo studente avrà ottenuto le competenze di base sul funzionamento dei differenti tessuti, competenze che saranno necessarie ad affrontare corsi più specifici degli anni successivi e conoscenze generali utili per la carriera professionale futura.

ANATOMIA UMANA:
Tessuti, Apparato locomotore, cardiovascolare, respiratorio, digerente, urinario, genitale,
sistema nervoso.
FISIOLOGIA:
Sintesi dei principi generali e della fisiologia cellulare, fondamentali per la fisiologia umana.
Trasporti di membrana e Comunicazioni cellulari.
Sistema Endocrino: concetti di base della regolazione del sistema endocrino. Azioni ormonali.
Cellule nervose e segnali elettrici: aspetti elettrofisiologici generali. Trasmissione sinaptica e giunzionale. Principali neurotrasmettitori e neuromodulatori.
Neurofisiologia centrale e periferica. Sistema nervoso centrale, Sistema nervoso somatosensoriale, Sistema nervoso autonomo.
Fisiologia del muscolo: meccanismo di contrazione e metabolismo. Muscolo liscio.
Fisiologia cardiovascolare: proprietà fisiologiche del muscolo cardiaco. Sangue, Ematocrito, Flusso ematico, Ciclo cardiaco, Centri cardiaci, Controllo della pressione arteriosa.
Apparato Respiratorio. Meccanica respiratoria, Centri respiratori, Trasporto dei gas.
Apparato Renale: funzioni fisiologiche. Filtrazione, Riassorbimento, Secrezione. Concetto di bilancio.
Equilibrio acido-base.
Apparato Digerente: Masticazione; Deglutizione, Digestione, Assorbimento. Regolazione gastrointestinale.
Metabolismo energetico: regolazione da parte del sistema endocrino. Termoregolazione.
Sistema immunitario.
ISTOLOGIA:
Il corso tratterà I seguenti argomenti:
--Basi di biologia cellulare contestualizzati all’istologia
--Basi di microscopia e tecniche istologiche.
--Morfologia e funzione dei principali tessuti del nostro organismo:
-tessuto epiteliale ed epidermide
-tessuto connettivo propriamente
detto e derma
-cartilagine
-tessuto osseo
-sangue
-tessuto muscolare
-tessuto nervoso.

Secondo il regolamento didattico del Corso.

Il corso si svolge con lezioni frontali e in teledidattica per i corsi mutuati al di fuori della sede di Siena.

ANATOMIA UMANA:
L’apprendimento della materia sarà verificato mediante una prova orale.
riguardante gli argomenti trattati durante il corso.
La prova permetterà di valutare le conoscenze relative all'organizzazione dei tessuti, alla posizione e struttura generale degli apparati, all'uso corretto di termini anatomici e alle principali caratteristiche morfologiche e funzionali di cellule, tessuti e apparati.
A richiesta degli studenti, verranno effettuate prove in itinere su argomenti specifici del programma.
FISIOLOGIA:
La prova finale sarà effettuata mediante un test scritto a risposta multipla, composto da 60 domande, ciascuna con cinque possibili risposte, di cui una sola corretta. Il test dovrà essere completato entro un tempo massimo di 50 minuti. Ai fini della valutazione saranno considerate esclusivamente le risposte corrette, alle quali sarà attribuito un punto ciascuna; non saranno invece applicate penalizzazioni per le risposte errate o non fornite.
ISTOLOGIA:
La prova finale sarà effettuata mediante test a risposta multipla che consisterà in 20 domande e quattro risposte possibili delle quali solo una corretta.

ANATOMIA UMANA:
Fondamenti di Anatomia e Fisiologia, Martini Nath, EdiSES, Atlante di Anatomia :
Prometheus, EdiSES.
FISIOLOGIA:
Ganong, Fisiologia Medica, Piccin.
German & Stanfield, FISIOLOGIA, EdiSES.
Rhoades & Pflanzer, Fisiologia Generale ed Umana, Piccin.
Guyton e Hall, Fisiologia Medica, Elsevier.
Vander : Fisiologia , Ambrosiana.
Ultime edizioni disponibili.
ISTOLOGIA:
Junqueira - Istologia: testo e atlante.
Autore: Mescher, e AAVV
ISBN: 978-88-299-3067-8
8a ed. italiana sulla 15a in lingua inglese
Data di pubblicazione: c2018
Editore: Piccin
Oppure:
Junqueira - Istologia : testo e atlante.
Autore: Mescher, e AAVV
ISBN: 978-88-299-2864-4
7a ed. italiana sulla 14a in lingua inglese
Data di pubblicazione: c2017
Editore: Piccin.

Il corso fornisce un inquadramento generale del mondo dei microrganismi patogeni per l’uomo e le basi per comprendere i principali meccanismi di patogenicità da essi attuati.

Introduzione al mondo dei microrganismi.
Batteriologia: struttura della cellula batterica, metabolismo e meccanismi di moltiplicazione batterica. Patogenicità e difese dell’ospite, chemioterapia antibiotica e meccanismi di resistenza.
Microrganismi eucariotici: Funghi e protozoi patogeni per l’uomo.
Struttura dei virus e ciclo di moltiplicazione, patogenicità virale e difese dell’ospite, terapia antivirale e meccanismi di resistenza.

Lo studente dovrebbe avere conoscenze di base di Biologia e Immunologia

Lezioni frontali

Prova scritta o orale

Microbiologia clinica, Eudes-Lanciotti.
Casa Editrice Ambrosiana.
Microbiologia, Wessner, Casa Editrice Zanichelli
Cevenini. Microbiologia Clinica. Piccin.

In conformità con gli obiettivi del Corso di Laurea in Tecniche di Laboratorio Biomedico, il Corso si propone di è far acquisire agli studenti le basi scientifiche e la preparazione teorico-pratica necessarie per essere abilitati all'esercizio della professione di Tecnico Sanitario di Laboratorio Biomedico e la metodologia e cultura necessarie alla formazione continua, nonché un livello di autonomia professionale, decisionale ed operativa.
Il Corso si articola sull'acquisizione e sull'integrazione delle conoscenze teoriche della Patologia generale e della Fisiopatologia, come scienze di base, delle scienze tecniche e di laboratorio biomedico, quali la genetica medica e le tecniche di immunologia, oltre alle attività formative del laboratorio di genetica.
In particolare il Corso si propone di fornire agli Studenti le conoscenze di base della patologia generale, della genetica medica, e delle tecniche immunologiche propedeutiche allo studio delle altre discipline previste dal curriculum accademico. Al termine del corso, lo Studente dovrà conoscere in maniera approfondita le modalità di trasmissione di una malattia genetica, i cromosomi umani e le anomalie cromosomiche, il gene e i vari tipi di mutazioni, la genetica dei tumori e le patologie multifattoriali. Inoltre lo studente dovrà conoscere i dettaglio le diverse tipologie di test diagnostico che si effettuano in un laboratorio di Genetica Medica.
Lo studente dovrà inoltre dimostrare:
1) Conoscenza degli agenti eziologici e dei meccanismi patogenetici delle malattie umane per la definizione della diagnosi e delle terapie
2) Conoscenza dei principi delle tecniche immunologiche e genetiche per l’applicazione in analisi quantitative e diagnostiche
3) Capacità di definire le tecniche di laboratorio utili alla diagnosi e alla terapia
4) Capacità critiche di giudizio e acquisizione degli strumenti per un continuo aggiornamento professionale

Concetto di malattia ereditaria, congenita e genetica. La consulenza genetica. Ereditarieta' mendeliana: alberi genealogici dove segregano malattie autosomiche dominanti, malattie autosomiche recessive, malattie legate al cromosoma X recessive, malattie legate al cromosoma X dominanti, malattie mitocondriali. Numero e morfologia dei cromosomi umani, le anomalie cromosomiche di numero e struttura. Le tecniche del cariotipo, FISH e array-CGH. Struttura di un gene, polimorfismi e i principali tipi di mutazione: sostituzioni nucleotidiche, delezioni e inserzioni. Le tecniche di estrazione del DNA e di analisi di mutazioni geniche (PCR, Southern blot, ASO, OLA, ARMS, SSCP, DHPLC, sequenziamento Sanger e di Nuova Generazione). Principi base della genetica dei tumori. Basi patogenetiche delle malattie multifattoriali.
Eziologia generale: Cause di malattia. Patologie da Radiazioni, da correnti elettriche,da trasferimento di energia termica, da variazioni della pressione atmosferica, da agenti chimici..
Patologia cellulare e delle matrici: Iperplasia ed ipertrofia. Metaplasia e anaplasia. Processi degenerativi cellulari. Degenerazione dei connettivi. Necrosi ed apoptosi.
Processo infiammatorio: eventi dell’angioflogosi e dell’istoflogosi. Cellule del processo infiammatorio. Mediatori chimici (Complemento, istamina, serotonina, Metaboliti acido arachidonico, citochine). Essudati: tipologie e composizione, diversità dai trasudati. Granulomi: tipologie. Manifestazioni sistemiche del processo infiammatorio (febbre, proteine di fase acuta, leucocitosi, VES). Risoluzione dell’infiammazione. Rigenerazione e reintegrazione connettivale. Guarigione delle ferite.
Tumori: Classificazione e nomenclatura. Comportamento biologico delle cellule tumorali. Tumori benigni e maligni. Metastatizzazione ed invasività. Cancerogenesi. Definizione a attivazione degli oncogeni. Proteine codificate dagli oncogeni. Geni oncosoppressori. Virus oncogeni. Gradazione e stadiazione. Diagnosi dei tumori: istodiagnostica e citodiagnostica. Marcatori tumorali.
Immunità naturale e specifica: Fasi della risposta immunitaria
Immunopatologia: reazioni di ipersensibilità e malattie autoimmuni
Anemie: parametri ematici, classificazione per morfologia e cause.
Globuli bianchi e piastrine: alterazioni qualitative e quantitative
Fisiopatologia del circolatorio e dell’emostasi: Emorragia, ischemia, infarto, iperemia, shock, trombosi, embolia, aterosclerosi.
Edema: localizzato e generalizzato. Cause e meccanismi fisiopatologici
Ittero: cause, meccanismi fisiopatologici e classificazione
Rene: cause e meccanismi dell’alterata funzionalità renale
Antigeni: definizione, concetto di aptene, epitopo, immunogenicità
Anticorpi: struttura e classi
Purificazione degli anticorpi: cromatografia di affinità. Produzione ed utilizzo degli anticorpi monoclonali.
Reazione antigene-anticorpo:valenza, affinità ed avidità
Misurazione dell’interazione antigene-anticorpo: reazione di precipitazione, curva di precipitazione, precipitazione in soluzione e in gel, agglutinazione
Principio e impiego di metodi radioimmunologici, immunoenzimatici e immunofluorescenti
Dosaggi immunologici con marcatori luminescenti: bioluminescenza, chemiluminescenza, elettrochemiluminescenza
Principio ed applicazioni della tecnica enzimo-immunochimica
Isolamento e identificazione delle cellule: citofluorimetria, uso di biglie magnetiche rivestite da anticorpi.
Impiego di tecniche per immunoistochimica
SDS-PAGE e Western-blotting
Applicazione dell’immunoelettroforesi

Lo studente dovrà possedere conoscenze di base della Biologia e della Biochimica; Conoscenza di base dell’anatomia, istologia e della fisiologia; Conoscenza di base dei meccanismi della risposta immunitaria

Le lezioni si svolgono con il supporto di diapositive powerpoint, con letture in cui gli studenti possono intervenire. Inoltre molti argomenti sono presentati con l’aiuto di filmati ed animazioni

Esame finale orale. Il voto finale è espresso come media ponderata dei giudizi di ciascun docente del Corso. Le domande poste al candidato nel corso dell'esame verteranno ad accertarne l'acquisizione delle capacità di scelta e gestione delle tecniche di laboratorio in relazione alla condizione valutata, tipologia di campione e finalità dell’analisi.
L'accertamento dell'acquisizione di capacità critica e di linguaggio appropriato permetterà di conseguire voti di eccellenza. Una conoscenza mnemonica e l’uso di un linguaggio corretto, ma non sempre appropriato, porteranno al conseguimento di valutazioni discrete/buone/più che buone. Conoscenze minime e linguaggio inappropriato comporteranno l'attribuzione di voti sufficienti o appena sufficienti. L'incapacità di dimostrare l'acquisizione delle conoscenze richieste, comporterà il non superamento dell'esame.

Genetica umana e medica. Autori: Neri G, Genuardi M. Edizione Masson.

• Patologia generale e Fisiopatologia generale. Per i corsi di laurea in professioni sanitarie". G.M. Pontieri. Piccin
• Immunologia. Biologia e patologia del sistema immunitario" J.R. Regueiro Gonzalez, C. Lopez Larrea, S. Gonzalez Rodriguez, E. Martinez Naves. Piccin

Al termine del corso gli studenti saranno in grado di:
-conoscere la principale strumentazione di laboratorio

• costruire archivi di dati;
• elaborare i dati per ottenere le principali statistiche descrittive ed inferenziali;
• Essere capaci di risolvere problemi di fisica di base

Il corso ha lo scopo integrare le conoscenze di Fisica e misure elettroniche per l'anlisi dei dati e degli strumenti principali di laboratorio. In particolare, per Fisica ci si occuperà della descizione delle principali leggi della meccanica e termodinamica.

Nessuno

Le lezioni vengono svolte prevalentemente con lezioni frontali ed esercitazioni in aula con l'uso del PC.

Al termine del corso sarà richiesto un elaborato nel quale gli studenti dovranno dimostrare di sapere analizzare i dati di un archivio messo a disposizione dal docente, saper rappresentare e commentare sinteticamente i risultati delle analisi. Il voto finale sarà la media dei voti conseguiti negli insegnamenti del CI

Appunti durante le lezioni

Orale

Orale

Orale